Urethraabstrich

MATERIALGEWINNUNG:

Die Untersuchungsmaterialien beim Mann umfassen Urethralabstriche, Urethralsekrete, Erststrahlurin (Morgenurin); bei der Frau sollten Zervixabstriche und Urethralabstriche untersucht werden. Mittelstrahlurin ist weniger geeignet.
Mit einem dünnen Gel-Tupfer wird Sekret aus der vorderen Harnröhre (1-3 cm) entnommen.
Der Patient sollte vor der Materialentnahme nicht Wasser lassen, da sonst abgeschilferte Zellen möglicherweise ausgewaschen werden und die Testempfindlichkeit beeinträchtigt wird.
Für die PCR sind die entsprechenden Abstrichbestecke und Transport-Kits zu benutzen.
Bei fehlendem Fluor oder zum molekulargenetischen Nachweis von Chlamydien und Mycoplasma genitalium eignet sich auch die erste Urinportion (10-20 ml der Zwei-Gläser-Probe) nach mindestens 2-3-stündiger Miktionskarenz oder der Morgenurin (Erststrahlurin).

• In Anlehnung an Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 10 Genitalinfektionen I 2011

Abnahmebesteck:

eSwab®-Abstrichtupfer

PROBENTRANSPORT & LAGERUNG:

Möglichst tagesgleicher Transport, ansonsten Lagerung im Kühlschrank bei 2-8 °C.

MIKROBIOLOGISCHE UNTERSUCHUNGEN:

Ansatz (täglich):

Mikroskopie
Aerobe Bakterien
Gonokokken umgehender Probentransport in Transportmedium: Kultur und Resistenztestung (eSwab®-Abstrichtupfer) und/oder PCR (Multi-Collect Specimen Collection Kit (oranger Verschluss))
Mycoplasma hominis und Ureaplasma spp. (Urogenital) (Zur Erhöhung der Erregerausbeute, sollte ein weiterer Abstrichtupfer zusätzlich nur für die Mycoplasmen- und Ureaplasmen-Diagnostik abgenommen werden.)
Sprosspilze

Bebrütungsdauer bzw. Bearbeitungszeit: ca. 3-4 Tage
Relevante Teilbefunde werden vorab mitgeteilt.

Zusätzliche Anforderungen:

Chlamydia trachomatis (PCR (Spezialabstrichbesteck, auf Anforderung kann N. gonorrhoeae per PCR aus dem gleichen Abstrichmaterial nachgewiesen werden.))
Mycoplasma genitalium: PCR (Spezialabstrich)
Trichomonas vaginalis: Für die Untersuchung (Mikroskopie (Nativpräparat)) müssen die Proben sofort verarbeitet und mikroskopiert werden (< 1 Stunde).
Bei Verdacht auf Herpes-simplex-Viren 1 und 2 (HSV-1/2) aus Bläscheninhalt: Zellkultur (Virustransportmedium (grüne Kappe); Kassenleistung) oder PCR (Multi-Collect Specimen Collection Kit (oranger Verschluss); keine Kassenleistung).
Gardnerella vaginalis

Hinweise:

Die Urethritis der Frau entspricht in Diagnose und Therapie der Urethritis des Mannes.
Häufigste Erreger der infektiösen Urethritis sind in den Industriestaaten Chlamydia trachomatis und Neisseria gonorrhoeae.
Zu den selten vorkommenden Keimen zählt Gardnerella vaginalis, die insbesondere bei Partnern von Frauen mit einer bakteriellen Vaginose (BV) zu finden sind.
Ureaplasmen, die aus dem Genitaltrakt gesunder Frauen und Männer isoliert werden, können, wenn in hohen Konzentrationen vorhanden, eine Urethritis hervorrufen (5-10%).
Das pathogene Potenzial von Mycoplasma genitalium wurde inzwischen mehrfach dokumentiert; die Keime sind bei 9-25% der Fälle ätiologisch bedeutsam.
Sehr selten werden bei einer Urethritis Herpes-simplex-Virus-1 (HSV-1), HSV-2, Adenoviren (häufig vergesellschaftet mit einer Konjunktivitis), Candida albicans, und Trichomonas vaginalis isoliert. Allerdings sollten Trichomonaden nur nach Kontakt zu Patienten mit einer Trichomonaden-Infektion oder bei Patienten mit genitalen Läsionen, ferner bei Therapieversagen oder chronischem Krankheitsverlauf berücksichtigt werden.
Nur ca. 40% der Urethritiden sind Monoinfektionen. I.d.R. ist die Chlamydien-Urethritis mit der Gonokokken-Infektion und äußerst selten mit M. genitalium vergesellschaftet.

• Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 10 Genitalinfektionen I 2011

Links:

Literatur:
• Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 10 Genitalinfektionen I 2011
• Neumeister B, Geiss HK, Braun RW, Kimmig P. Mikrobiologische Diagnostik. Georg Thieme Verlag Stuttgart-New York 2009
• Winn W, Allen SD, Allen S, Janda W, Koneman EW, Schreckenberger PC, Procop GW, Woods GL: Koneman’s Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 6th edition. Baltimore, MD: Lippincott Williams & Wilkins; 2006