Immunsuppression (inkl. AIDS) bzw. Immuninkompetenz mit schwerer Durchfallsymptomatik

MATERIALGEWINNUNG:

• Vor der Defäkation muss die Harnblase völlig entleert werden.
• Der Stuhl sollte in eine frisch gespülte, mit Papier getrocknete und ausgelegte Toilettenschüssel oder in ein sauberes Gefäß (z.B. Steckbecken) entleert werden.
• Bei Säuglingen kann die Stuhlprobe aus der Windel gewonnen werden.
• Mit dem im Stuhlröhrchen enthaltenen Löffelchen ist mindestens eine 3-5 ml entsprechende Menge Stuhl (etwa walnussgroß) zu entnehmen.
• Blutige, schleimige oder eitrige Anteile sollten bevorzugt entnommen werden.
• Sind zusätzlich parasitologische oder immunologische Untersuchungen (z.B. Antigen-ELISA) vorgesehen, sollte das Stuhlröhrchen zur Hälfte gefüllt sein.
• Angabe der klinischen Symptomatik (insbesondere Fieber, rezidivierende abdominelle Beschwerden, Appendizitis, Arthritis, Erythema nodosum).
• Angabe der Vorgeschichte (insbesondere Reiseanamnese, Antibiotikatherapie, kürzliche operative Eingriffe, Lebensmittelanamnese, Hinweise auf Immunsuppression).

• In Anlehnung an Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 9 Gastrointestinale Infektionen 2013
• In Anlehnung an Burkhardt F. (Hrsg.) Mikrobiologische Diagnostik. Thieme, Stuttgart; New York 1992

Abnahmebesteck:

• Stuhlröhrchen

PROBENTRANSPORT & LAGERUNG:

• Tagesgleicher Transport, ansonsten Lagerung im Kühlschrank bei 2‐8 °C.

MIKROBIOLOGISCHE UNTERSUCHUNGEN:

Nach makroskopischer Beurteilung der Stuhlprobe:

Ansatz:

• Gastrointestinale Infektion (Alter: 0-3 Jahre) – Pathogene Erreger oder
• Gastrointestinale Infektion (Alter: 4-6 Jahre) – Pathogene Erreger oder
• Gastrointestinale Infektion (Alter: ≥ 7 Jahre) – Pathogene Erreger
• +Aeromonas / Plesiomonas / Vibrionen
• +EHEC (Enterohämorrhagische E. coli bzw. Shigatoxinbildende E. coli (STEC))
• +EPEC (enteropathogene E. coli)
• +Clostridium difficile-Toxin A/B
• +Aeromonas / Plesiomonas / Vibrionen
• +Sprosspilze
• +Viren (Rota-, Noro-, Adeno- und Astroviren)
• +Lamblien
• +Amöben
• +Kokzidien (z. B. Kryptosporidien)
• +Mikroskopie (Darmparasiten)

• Ansatz in Anlehnung an Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 9 Gastrointestinale Infektionen 2013

Zusätzliche Anforderungen (Rücksprache mit Laborarzt):

• Tuberkulose (Mykobakterien, TBC)*
• Mikrosporidien**
• Pseudomonas spp.
• Staphylococcus aureus
• virologische Untersuchung auf Zytomegalieviren sowie ggf. auf HI-Viren

*Versand an das Nationale Referenzzentrum für Mykobakterien, Borstel
**Versand an das Institut für Hygiene und Umwelt, Hamburg

Hinweise:

• Zur ätiologischen Klärung bei akuter Gastroenteritis sollten 1-2 (ggf. bis zu drei Proben) geeignete Stuhlproben zeitnah auf relevante Bakterien und Viren mikrobiologisch untersucht werden.
• Da Wurmeier und Protozoenzysten nicht dauernd in gleicher Zahl ausgeschieden werden, sollten bei Verdacht auf Parasitenbefall des Darms mindestens drei Stuhlproben untersucht werden, wobei der Abstand zwischen den Proben 1-3 Tage betragen sollte. Damit wird der schwankenden Parasitenausscheidung Rechnung getragen und die Nachweisquote erhöht.
• Bei Verdacht auf Typhus und Paratyphus ist die Abnahme von Blutkulturen immer notwendig und vor allem in der ersten Krankheitswoche aussichtsreich.
• Bei Cholera-Verdacht ist das Laboratorium sofort telefonisch zu verständigen und die Probe auf schnellstem Wege zu übermitteln.
• Rektalabstriche sollen wegen der eingeschränkten Untersuchungsmöglichkeiten (Ausnahme: Shigellen) nur eingesandt werden, wenn Stuhl nicht gewonnen werden kann. (Der Patient sollte mit angewinkelten Knien auf der Seite gelagert werden. Der eSwab®-Abstrichtupfer ist bis in das Rektum einzuführen und vorsichtig zu drehen.)
• Bei Postversand ist auf vorschriftsgemäße Verpackung zu achten (Postvorschrift!).

• In Anlehnung an Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 9 Gastrointestinale Infektionen 2013
• Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 4 Parasitosen 2013
• In Anlehnung an Hagel S et al. S2k-Leitlinie Gastrointestinale Infektionen … Z Gastroenterol 2015; 53: 418-459

• Ggf. Meldepflicht nach Infektionsschutzgesetz – IfSG – § 6 Meldepflichtige Krankheiten beachten.
• Meldepflicht gemäß IfSG § 7 (Labormeldepflicht) wird ggf. auf dem Befund angegeben.

Links:

• AWMF-Leitlinie: Durchfall, akut
• AWMF-Leitlinie: Gastrointestinale Infektionen und Morbus Whipple
• RKI-Ratgeber – Salmonellose
• RKI-Ratgeber – Typhus
• RKI-Ratgeber – Shigellose
• RKI-Ratgeber – Yersiniose
• RKI-Ratgeber – Campylobacter-Infektionen
• RKI-Ratgeber – Enterohämorrhagische E. coli (EHEC, STEC, VTEC)/ Hämolytisch-urämisches Syndrom (HUS)
• RKI-Ratgeber – Noroviren
• AWMF-Leitlinie: Gastroenteritis-Ausbrüche durch Noroviren: Hygienemaßnahmen
• RKI-Ratgeber – Giardiasis
• AWMF-Leitlinie: Amöbenruhr, Diagnostik und Therapie
• RKI-Ratgeber – Kryptosporidiose (Cryptosporidium parvum)
• RKI-Ratgeber – Wurmerkrankungen
• AWMF-Leitlinie: Schistosomiasis (Bilharziose), Diagnose und Therapie
• Infektionsschutzgesetz – IfSG – § 8 Zur Meldung verpflichtete Personen
• Infektionsschutzgesetz – IfSG – § 6 Meldepflichtige Krankheiten

Literatur:
• Burkhardt F. (Hrsg.) Mikrobiologische Diagnostik. Thieme, Stuttgart; New York 1992
• Hagel S et al. S2k-Leitlinie Gastrointestinale Infektionen … Z Gastroenterol 2015; 53: 418-459
• Löscher T, Burchard GD. (Hrsg.) Tropenmedizin in Klinik und Praxis mit Reise- und Migrationsmedizin. Thieme, Stuttgart; New York 2010
• Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 4 Parasitosen 2013
• Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 9 Gastrointestinale Infektionen 2013
• Neumeister B, Geiss HK, Braun RW, Kimmig P. Mikrobiologische Diagnostik. Georg Thieme Verlag Stuttgart-New York 2009
• Winn W, Allen SD, Allen S, Janda W, Koneman EW, Schreckenberger PC, Procop GW, Woods GL: Koneman’s Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 6th edition. Baltimore, MD: Lippincott Williams & Wilkins; 2006