Uricult, Dip-Slide (Cled/MacConkey)
MATERIALGEWINNUNG:
- Dip-Slide aufschrauben und aus dem Kunststoffbehälter herausziehen. Dabei die Nährbodenoberflächen nicht berühren!
- Dip-Slide in den frisch gewonnenen Urin kurz eintauchen, so dass alle Nährbodenoberflächen vollständig benetzt werden (bei geringen Urinmengen Nährböden nacheinander gleichmäßig überfluten).
- Überschüssigen Urin am unteren Ende des Nährbodenträgers vollständig abtropfen lassen.
- Dip-Slide wieder in den Kunststoffbehälter einführen und fest verschrauben.
- Behälter mit den beiliegenden KIebeetiketten versehen und Patientenangaben eintragen.
- Dip-Slide bei 36 ± 1°C für 16-24 Stunden inkubieren. Bei Verdacht einer Infektion mit Pilzen oder Hefen die Inkubationszeit auf bis zu 72 Stunden verlängern.
Abnahmebesteck:
PROBENTRANSPORT & LAGERUNG:
- Dip-Slide bei 36 ± 1°C für 16-24 Stunden inkubieren. Bei Verdacht einer Infektion mit Pilzen oder Hefen die Inkubationszeit auf bis zu 72 Stunden verlängern.
- möglichst tagesgleicher Transport, ansonsten Lagerung im Kühlschrank bei 2‐8 °C
- Unbebrütete Dip-Slide bitte unbedingt kennzeichnen!
MIKROBIOLOGISCHE UNTERSUCHUNGEN:
Ansatz:
- Keimzahlbestimmung (bei vollständiger Beimpfung der Nährböden)
- Aerobe Bakterien
Zusätzliche Anforderungen:
- Zusatzanforderung auf MRSA, ESBL bzw. MRGN und VRE
- Sprosspilze
Links:
Literatur:
• Mikrobiologisch-infektiologische Qualitätsstandards (MiQ) 2 Harnwegsinfektionen 2005
• Neumeister B, Geiss HK, Braun RW, Kimmig P. Mikrobiologische Diagnostik. Georg Thieme Verlag Stuttgart-New York 2009
• Winn W, Allen SD, Allen S, Janda W, Koneman EW, Schreckenberger PC, Procop GW, Woods GL: Koneman’s Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 6th edition. Baltimore, MD: Lippincott Williams & Wilkins; 2006